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姬姆萨染色前沿信息_包涵体姬姆萨染色(2024年11月实时热点)

内容来源：中小站长动力网所属栏目：教程更新日期：2024-11-26

姬姆萨染色

病理切片染色技术服务全解析病理染色在医学诊断中扮演着至关重要的角色。通过染色，医生可以观察到细胞和组织的微观结构，从而诊断出各种疾病。不同的染色方法可以揭示组织中的不同成分，以下是部分常见的病理染色方法： 𐟔 HE染色 𐟔 Masson染色 𐟔 PAS染色 𐟔 阿利新蓝染色 𐟔 AB-PAS染色 𐟔 天狼猩红染色 𐟔 甲苯胺蓝染色 𐟔 尼氏染色 𐟔 肥大细胞染色 𐟔 油红O染色 𐟔 番红固绿染色（骨组织） 𐟔 LFB髓鞘染色 𐟔 茜素红染色 𐟔 EVG染色 𐟔 Trap破骨细胞染色 𐟔 抗酸染色 𐟔 ALP碱性磷酸酶染色 𐟔 瑞士姬姆萨染色 𐟔 Von Kossa染色 𐟔 高尔基染色（全景扫描） 𐟔 普鲁士蓝染色 𐟔 DAB加强法普鲁士蓝染色 𐟔 苯胺蓝染色 𐟔 黑色素染色 𐟔 网状纤维染色 𐟔 刚果红染色 𐟔 Glodner三色法染色 𐟔 维多利亚蓝染色 𐟔 Š乳糖苷酶染色 𐟔 ATP染色 𐟔 甘氨酸银染色（镀银）通过这些染色方法，医生可以更准确地诊断疾病，制定治疗方案。

急性臭氧暴露对大鼠肺部细胞遗传毒性的影响是什么？ ? 前言 ? 臭氧(O3)是氮氧化物和挥发性有机物的二次污染物。近年来，光化学反应造成的大气O3污染逐渐变得较为严重，其主要来源是光化学烟雾，其次还可来源于消毒过程中紫外灯的使用等。 ? 已有研究表明，臭氧对植物、体外培养的微生物和细胞具有遗传毒性，关于体外培养细胞的研究多集中于对淋巴细胞、 A549细胞系、骨髓细胞等，对体内肺部细胞的遗传毒性研究相对较少，且仅局限于某一个水平探讨引起的遗传毒性。 ?? 将肺组织单细胞悬液涂于干净的载玻片上，自然晾干后，插入含甲醇固定液的槽中固定10 min，取出后放入Giemsa染色液中染色15 min，超纯水冲洗，晾干，油镜下观察计数。 ? 遵循最常用的方法，即 Z字形方法来筛选载玻片。在每张载玻片上计数 1 000个具有完整细胞核和细胞边界的细胞。从1 000个完整的细胞中计数MN的数量。 ? ?DNA-蛋白质交联实验 ? 取0．5 ml肺组织制备好的单细胞悬液，加入 0．5 ml SDS溶液，轻轻摇匀，65℃水浴加热10 min。将100 Tris-HCl-KCl溶液加入到上述溶液中。充分混合后，将液体倒入1 ml聚丙烯移液器吸头中，重复上述步骤7次，使DNA长度一致。 ? 冰上预冷5 min，4℃10 000 r/min离心5 min，将上清液转移到另一个离心管中保存。向沉淀中加入1 ml洗涤缓冲液，65℃水浴加热10 min。冰上预冷5 min。4℃，10 000 r/min离心5 min，收集上清到另一离心管中。 ? 向上述沉淀中加入0．5 ml洗涤缓冲液和0．5 ml 蛋白酶K溶液，充分混匀。60℃水浴中加热3 h，冰上骤冷5 min。4℃，12 000 r/min离心10 min，收集上清。 ? 用洗涤缓冲液制备各浓度的小牛胸腺DNA 溶液1 ml，使其终浓度为0、50、150、250、375、500、 750、1000、1500、2500 ng/ml，分别加入1 ml新鲜制备的Hoechst33258溶液(400 ng/ml)，混合均匀后，测量各组溶液的荧光强度，绘制DNA浓度标准曲线。 ? 取上述第三、四步骤中离心管的上清液并加入 1 ml新鲜制备的Hoechst 33258溶液。混合均匀后，在相同条件下测量荧光值。DNA和蛋白质交联率计算公式:DNA-蛋白质交联率=交联DNA含量/ (交联DNA含量+游离DNA含量)。 ? 实验结果数据采用均数ⱦ ‡准差(xⱳ)表达，采用SPSS 13．0统计软件进行分析，计数数据用卡方检验，计量数据用方差分析(ANVOA)进行比较。 ? 大鼠肺组织内8-OHdG含量的影响 ? 由于臭氧具有强氧化性，8-OHdG是DNA氧化损伤的产物，通常检测8-OHdG的含量可以反映出 DNA氧化损伤程度。随着臭氧浓度的升高，肺组织内8-OHdG的含量逐渐升高，0．12 ppm、0．5 ppm、1．0 ppm、2．0 ppm及4．0 ppm臭氧暴露组与对照组相比均有显著性差异，且在臭氧浓度为4．0 ppm时达到最大值(P＜0．05)。 ? 荧光显微镜下观察，对照组未见拖尾的细胞，只有完整的头部，表明细胞未发生DNA断裂;臭氧暴露组均可观察到拖尾的细胞，断裂的DNA游动移出细胞核外，形成尾部，形似彗星。 ? 采用软件分析图片显示，随着臭氧浓度的增大，0．12 ppm、0．5 ppm、1．0 ppm、2．0 ppm及4．0 ppm暴露组的拖尾数量及拖尾长度均显著升高(P＜0．05)。 ? 大鼠肺部细胞内DNA-蛋白质交联率的变化 ? DNA-蛋白质交联（DNA-protein crosslink，DPC）是指DNA链通过共价键的作用与蛋白质稳定的结合在一起，是一种较为严重的DNA损伤形式。 ? 与对照组相比，0．12 ppm、0．5 ppm、1．0 ppm、2．0 ppm及4．0 ppm臭氧暴露组大鼠肺部细胞内DNA-蛋白质交联率均显著性增加(P＜0．05)，且在2．0 ppm时达到最大值。 ? 急性臭氧暴露对肺部细胞染色体水平的影响 0．12 ppm、0．5 ppm、1．0 ppm、2．0 ppm及4．0 ppm 臭氧暴露组大鼠肺部细胞微核率分别为1．4‰，1． 6‰，2．0‰，2．4‰，3．0‰和3．2‰，微核率的发生与对照组相比均无统计学差异(P＞0．05)，但均随着臭氧浓度的升高，微核的发生率增加。 ? 结论 ? 综上所述，急性臭氧暴露对大鼠遗传毒性的影响，在DNA断裂方面，臭氧浓度越大，断裂损伤越大，而DNA-蛋白质交联方面，随着臭氧浓度的变化，出现先升高后下降的趋势。所以，臭氧致肺细胞遗传毒性方面，不同的水平进行分开检测与描述。

瑞氏-吉姆萨染色法：细胞染色全攻略 𐟌ˆ 瑞氏-吉姆萨染色（Wright-Giemsa Staining）的原理：瑞氏染料由酸性染料伊红和碱性染料亚甲蓝组成。血红蛋白和嗜酸性颗粒为碱性蛋白质，与酸性染料伊红结合呈红色；细胞核蛋白和淋巴细胞胞浆为酸性蛋白质，与碱性染料美蓝或天青结合，呈紫蓝色；中性颗粒呈等电状态，与伊红和美蓝均可结合，呈淡紫色。吉姆萨染料由伊红和天青组成，染色原理与瑞氏染色法基本相同。瑞氏染色法对细胞浆内的颗粒染色效果好，但对细胞核的染色不如吉姆萨染色法。吉姆萨染色法对细胞核着色好，但对胞浆颗粒着色较差，且有时对细胞核着色较深，核结构显示不佳。为兼顾二者之长，常用瑞氏-吉姆萨复合染色法。 𐟌ˆ 用途和目的：常用于血液涂片、肺泡灌洗液涂片、骨髓细胞涂片、细菌、染色体、组织切片等的染色。标本染色后，相应各类细胞呈现不同的着色，从而达到辨别其形态特征的目的。 𐟌ˆ 染色步骤：自来水流水缓慢冲洗晾干后的载玻片洗去杂质，注意流水从涂片上方流下，避免直接冲洗细胞；将载玻片晾干后置于瑞氏染液中染色10分钟；尽量沥干载玻片，再置于吉姆萨染液中染色4分钟。染色完毕后流水缓慢冲洗载玻片，将多余染液洗去；载玻片晾干后显微镜下观察。此法常用于小鼠肺泡灌洗液涂片的染色，其他标本可以根据染色结果适当调整染色时间。 𐟌ˆ 显微镜下细胞的辨别：红细胞：平均直径7，细胞呈粉红至红色，中央因双凹圆盘结构而呈现空白。单核细胞：胞体圆至椭圆形，直径12-20，胞浆灰蓝色且稍有粗糙感，半透明似毛玻璃，胞质中常有小空泡。成熟的单核细胞胞核呈肾形、马蹄形、不规则形等，细胞核常有扭曲和折叠感。淋巴细胞：分大（直径12-15）、小（直径6-9）两大类，圆形或椭圆形，胞质淡蓝色透明，无颗粒或偶有数颗紫红色的嗜天青颗粒。核圆形，直径接近细胞直径80%，染色质呈浓集的团块状。中性粒细胞：胞体圆形至椭圆形，直径10-15。胞质呈无色或极浅的淡粉红色，弥散分布许多浅红或浅紫的细小颗粒。细胞核形态多样，可呈长杆状，也可为分叶状核，2-5叶不等，叶与叶间有细丝相连。嗜酸性粒细胞：细胞直径13-15，胞浆中充满嗜酸性颗粒，颗粒粗大整齐，排列均匀紧密，为砖或鲜红色。在染色较深的涂片中，颗粒呈现深橙、棕至咖啡色。细胞核分叶，多为两叶呈眼镜状，颜色为深紫色，偶见3叶。

医学遗传学检验实验报告 𐟓… 实验日期：2024年3月24日 𐟓 实验项目名称：X染色体标本的制备与观察 𐟏 实验室名称：402 𐟔젥ꌥŽŸ理：在女性体细胞内，有两条X染色体，其中一条是异型，浓缩成小结，经过染色后，在显微镜下可以观察到。 𐟓栦料与试剂：显微镜玻片盐酸 Giemsa染色液磷酸缓冲液 𐟓‹ 实验步骤：取材制片：用口腔棉签取材，将棉签上的细胞载于玻片上。固定：将带细胞的玻片置于甲醇和水的混合液（甲醇:水=3:1）中，气干。解离：将带细胞的玻片置于5mol的HCl中解离20分钟，然后用自来水冲洗4次。染色：将玻片置于Giemsa染色液中染色10分钟，然后用流水冲洗。镜检：在油镜下观察上皮细胞形态，找出X小体。 𐟓Š 实验结果与分析：通过显微镜观察，可以看到X小体的形态和特征，了解其在临床上的意义。 𐟔 性别鉴定：通过观察X染色体的形态，可以确定性别。 𐟏堁BO血型的基因检测：通过特定的基因检测方法，确定ABO血型。 𐟓Š 实验报告内容：实验目的实验原理实验室用的仪器、材料实验步骤实验过程原始记录（数据、图标、计算）实验结果与分析通过本次实验，我们掌握了X染色体标本的制备与观察方法，了解了X染色体的形态和特征，以及其在临床上的意义。

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