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伊红染色液前沿信息_伊红染色存活率参考值(2024年11月实时热点)

内容来源：中小站长动力网所属栏目：教程更新日期：2024-11-27

伊红染色液

𐟔젧Ÿ𓨜᥈‡片HE染色全攻略：步骤与技巧苏木精-伊红染色法（Hematoxylin-Eosin staining），简称HE染色法，是切片技术中常用的染色方法之一。苏木精染液为碱性，主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色；伊红为酸性染料，主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色。 𐟧ꠥꌦ�꤯𜚊取样固定取新鲜的组织样品，加入4%多聚甲醛组织固定液的EP管中。取样材料应该小而薄，约黄豆粒大小。脱水采用梯度酒精浓度法脱水。通常选择50%-60%-70%-90%-95%-100%的浓度梯度，各酒精浓度要求准确。95%以前各步骤脱水1小时，95%和100%均分为两步进行，分别脱水30分钟。实验中常将组织在后一步的95%的酒精溶液中过夜，以便进行脱脂。透明浸蜡为了使石蜡更容易进入组织，要对脱水后的组织进行透明处理。将组织依次浸入二甲苯:无水乙醇(1:1)溶液和二甲苯透明样品各30分钟，然后在60℃的石蜡溶液中充分浸泡2小时。包埋和切片通过包埋机，将浸泡后的组织块使用蜡液包埋后，放到冷台上凝固。之后使用刀片进行修整，在切片机上固定好后进行连续切片（5um）。所得的切片用银子在42℃温水中展开，之后固定在载玻片上，经40Ⰳ烘干后进行HE染色。 HE染色 HE染色的程序如下：浸入二甲苯ⅠⅡ，95%酒精，90%酒精，80%酒精，70%酒精各15分钟。二甲苯:100%酒精(1:1)，100%酒精Ⅰ，50%酒精，蒸馏水各2分钟。苏木精染液5-10分钟，水洗后分化入1%盐酸酒精5秒，自来水10分钟。 1%氨水蓝化，自来水，50%，70%，80%，90%和95%酒精各2分钟。伊红染液5分钟，95%酒精，100%酒精ⅠⅡ，100%酒精:二甲苯(1:1)，二甲苯I、各2分钟。中性树脂封片，不应该等切片上的二甲苯干了再封固。通过以上步骤，即可完成HE染色，观察到细胞核和细胞质的清晰染色效果。

伊红染液在组织学、胚胎学和病理学领域，HE染色法是一种广泛使用的染色技术，它能够清晰地显示组织切片中的细胞和组织结构。𐟔좜芊𐟌ˆ染色原理：细胞核染色：苏木精作为碱性染料，与细胞核内的DNA等带负电荷的物质结合，使细胞核呈现美丽的蓝色。细胞浆染色：伊红作为酸性染料，在特定pH条件下与细胞浆结合，赋予细胞浆红色或粉红色的外观。分化作用：通过盐酸乙醇分化液去除过多的染色剂，确保染色效果清晰。返蓝作用：使细胞核从红色恢复为蓝色。 𐟓染色注意事项： pH值控制：对于固定时间较长的组织，需要适当处理以确保细胞核着色良好。分色时间：严格控制分色时间，以达到细胞核清晰而细胞质基本无色的效果。酒精脱水：脱水必须彻底，以避免出现白色不透明状态。防止干燥：避免切片干燥，以免影响神经元形态。污染预防：定期过滤染液和试剂，防止切片被污染。冬季加温：在冬季低温时，适当加温二甲苯以确保脱蜡完全。封片技巧：使用中性树脂封片，盖片要合适，树脂浓度适当且不能有气泡。 𐟔常见问题解析：细胞核、细胞质染色均淡：可能是苏木素染色液和伊红染色液浓度过低或染色时间过短。解决方法：适当提高染色液浓度并延长染色时间。切片部分区域不着色：可能是组织切片在染色过程中部分区域干燥，或者切片上有油脂等污染物。解决方法：染色时保持切片湿润，并在切片前做好清洁处理。伊红染色过深：伊红染色液浓度过高或染色时间过长。解决方法：适当稀释伊红染色液或减少染色时间。切片易脱落：可能是载玻片不干净、黏附剂使用不当或烤片温度不够。解决方法：确保载玻片清洁并正确使用黏附剂、保证烤片温度。通过这些步骤和注意事项，HE染色法能够提供清晰、准确的组织结构图像，为科研和诊断提供有力支持。𐟔𐟌Ÿ

𐟧숅染色实验问题大揭秘！ 𐟔 你是否在HE染色实验中遇到过各种问题？别担心，这里为你揭秘常见问题及其解决方案！ 𐟒⠦Ÿ“色不均匀？可能是因为组织太厚或固定时间过长。试试剖开组织固定，并确保切片厚度均匀哦！ 𐟘𕠥ˆ‡片染色模糊？可能是脱蜡前未烘烤或脱蜡时间不够。记得烘烤切片，并使用新鲜的脱蜡液。 𐟘“ 染色液不足或组织干涸？确保染色液足够，并保持组织湿润。如果干涸，可以尝试重新染色。 𐟤” 细胞核染色过浅？可能是苏木素染液停留时间短或苏木素失效。重新染色，并调整停留时间。 𐟘𑠥ˆ‡片有大白色斑块？可能是脱蜡前烤片温度低或时间短。确保烤片条件适当，并定期更换脱蜡溶剂。 𐟘” 伊红染色较淡？可能是切片在苏木素染液中停留过长。适当减少停留时间，并确保伊红染色液和时间适当。遵循这些解决方案，你的HE染色实验一定会更上一层楼！𐟚€ 熟练掌握染色技术，注意细节，高质量染色结果就在眼前！

𐟧숅染色组织切片制作全攻略𐟔슰Ÿ’‰ HE染色，即苏木精-伊红染色法，是生物医学领域的经典染色技术。想要掌握它？跟着这个攻略，一步步来！ 1️⃣ 切片准备𐟔ꊊ* 确保切片厚度均匀，无皱褶或破损，这样染色后观察更清晰。 * 脱蜡是关键！彻底脱蜡能避免切片着色不均，影响观察效果。 2️⃣ 染色液管理𐟧ꊊ* 新旧染色液染色时间不同，要根据切片数量和染色液状态来调整。 * 定期更换染色液，如苏木精、伊红等，保持染色效果。 * 调节pH值也很重要，影响细胞核着色。 3️⃣ 染色过程控制𐟌᯸ * 苏木精染色时间要适中，根据苏木精的PH值、成熟度和室温来定。 * 伊红染色要快速，根据切片数量逐步延长染色时间。 * 蓝化过程不可少，确保细胞核显示更清晰。 4️⃣ 冲洗与封固𐟚🊊* 染色后用清水或适当溶液冲洗切片，去除多余染料。 * 封固时选中性树脂，避免褪色，注意封固时无气泡。 5️⃣ 其他注意事项⚠️ * 避免切片干燥，影响观察效果。 * 妥善保存染色试剂，避免污染和失效。 * 严格遵守实验室操作规范，确保结果准确可靠。 𐟎‰ 掌握这些技巧，你就能制作出高质量的HE染色组织切片啦！为科研工作添砖加瓦！

𐟧젧Ÿ𓨜᥈‡片HE染色实验全攻略 𐟓– 𐟔젧𛄧𛇥Œ…埋步骤：乙醇脱水：将组织依次浸泡在70%、80%、90%、95%和100%的乙醇中，各40分钟。注意，骨性和钙化组织需在脱钙液中浸泡24小时。透明处理：将组织依次浸泡在三个二甲苯中，各1小时。浸蜡：将组织依次浸泡在三个石蜡缸中，各1小时。包埋：将液态石蜡倒入模具盒中，将浸好蜡的组织块平放底部，切面朝下，待石蜡凝固后去掉包埋框，完全冷却后修整蜡块。 𐟔ꠥˆ‡片制作：将预冷的蜡块固定在石蜡切片机上，使蜡块的切面与刀口平行，刀的倾斜度通常为15度。调节切片厚度为4微米，切成厚度均匀的切片。用毛笔轻轻托起切片，放入展片箱中，水温控制在45度左右，待摊平整后捞片。将切片贴附在载玻片上，放置在65度的烤片机上烤1小时，再放入烘箱内烘烤2小时。 𐟌Š 石蜡切片脱蜡至水：将石蜡切片依次放入二甲苯Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ中各10分钟，再放入无水乙醇Ⅰ、Ⅱ中各5分钟，然后依次放入90%、80%、70%和50%的酒精中各5分钟进行梯度脱蜡。 𐟎蠈E染色：将石蜡切片放入苏木素染液中染色0.5-1分钟，自来水漂洗。用1%盐酸酒精分化数秒，自来水漂洗。用1%氨水返蓝1分钟，流水冲洗数秒。放入伊红染液中染色数秒，流水漂洗。 𐟔– 脱水封片：将石蜡切片依次放入75%和85%的乙醇中各2分钟，再放入无水乙醇中5分钟两次。将切片从二甲苯中取出，用中性树胶封片。 𐟔 结果判读：细胞核为蓝色，细胞质为红色。

𐟧숅染色组织切片制作指南𐟒‰ 𐟔젦ƒ𓨦了解HE染色组织切片的制作流程吗？跟着我们的步骤，一步步来！ 𐟓株*实验准备**： 1️⃣ 主要器材：脱水机、包埋机、病理切片机、冻台、组织摊片机、正置光学显微镜和成像系统。 2️⃣ 必备试剂：无水乙醇、二甲苯、通用型组织固定液、环保型脱蜡液、中性树胶、苏木素-伊红(H&E)染液和高清恒染试剂盒。 𐟔꠪*组织切片制备**： * 从病理组织取材并进行固定。 * 使用包埋机进行包埋，然后切成薄片。 𐟌ˆ **染色步骤**： 1️⃣ 脱蜡与水化：将切片依次放入脱蜡液和不同浓度的酒精中，最后用水冲洗。 2️⃣ 预处理：用高清恒染预处理液处理切片。 3️⃣ 苏木素染色：让切片在苏木素染液中染色，然后进行分化和返蓝处理。 4️⃣ 伊红染色：用伊红染液对切片进行染色。 5️⃣ 脱水与封片：通过一系列脱水步骤，最后用中性树胶封片。 𐟔 **结果判读**： * 细胞核应为蓝色，细胞质为红色。 𐟓 **操作要点**： * 注意细胞核的分化程度，确保染色效果。 * 定期检查苏木素和伊红的效价，及时更换。现在，你准备好开始你的HE染色实验了吗？𐟧ꢜ耀

HE染色：组织学实验的经典染色法 𐟎芥˜🯼Œ大家好！今天我们来聊聊HE染色，这可是组织学、胚胎学和病理学研究中的老大哥了。HE染色法其实就是在石蜡切片技术中常用的染色方法之一。它用苏木精染液和伊红染料来给细胞和组织着色，具体来说，苏木精染液是碱性的，主要让细胞核内的染色质和胞质内的核酸变成紫蓝色；而伊红则是酸性染料，主要让细胞质和细胞外基质中的成分变成红色。 HE染色的特点嘛，首先是它能在长期保存的情况下保持清晰度，不容易产生沉淀和金属颗粒。其次，它的应用范围非常广，可以用在人、动物、畜牧、水产等各个领域。无论是组织石蜡切片、冰冻切片还是组织细胞的染色，都能用它搞定。而且，苏木素染色液还能重复使用，真是经济实惠。说到实验步骤，其实也不复杂。首先，你要准备好你的石蜡切片，然后依次用苏木精染液和伊红染料进行染色。染色完成后，再用酒精和水进行脱水处理。最后一步就是封片了，用中性树脂将切片封好，这样你的HE染色切片就完成了！当然啦，做实验的时候还是要多加注意一些小细节。比如，染色时间不能太长也不能太短，不然颜色会不均匀。还有，脱水处理的时候要注意酒精的浓度和时间，不能让切片变得太干或者太湿。总之，HE染色法虽然简单但非常实用，是每个实验室都必备的技术之一。希望这篇文章能帮到你们，如果有任何问题或者想法，欢迎大家在评论区交流哦！𐟘Š

𐟧숅染色组织切片制作指南𐟒‰ 𐟔절E染色，全称苏木精和伊红染色，是生物医学中的经典染色技术。 𐟒™ 苏木精，碱性染料，将细胞核等嗜碱性结构染成蓝紫色。 ❤️ 伊红，酸性染料，将细胞质等嗜酸性结构染成粉红色。 𐟓 制作步骤要严格： 1️⃣ 组织切片脱蜡要彻底，否则染色难。 2️⃣ 苏木素染液要定期过滤，防止沉渣。 3️⃣ 染色时间要适中，观察显微镜调整。 4️⃣ 分化步骤关键，避免染色不匀。 5️⃣ 还原液浓度要适中，避免组织脱落。 6️⃣ 伊红染色要轻柔，避免胞核模糊。 7️⃣ 脱水、透明要彻底，避免雾状膜。 8️⃣ 封固剂要适量，避免气泡产生。 9️⃣ 切片要妥善保存，避免阳光直射。 𐟎œ€终，一张优质的HE染色切片应呈现细胞核蓝、胞浆红、红细胞桔红的清晰形态。 𐟔 HE染色，病理诊断的基石，每一步都需精确控制。

𐟔짟𓨜᥈‡片制作全攻略𐟒ꊰŸ笨‹木精-伊红染色法，简称HE染色，是切片技术中的经典染色方法。苏木精染液让细胞核和核糖体呈现紫蓝色，伊红则使细胞质和细胞外基质染成红色。 𐟓Œ实验步骤来啦： 1️⃣ 取样固定：新鲜组织样品加入4%多聚甲醛组织固定液中，材料要小而薄哦。 2️⃣ 脱水处理：用梯度酒精脱水，50%-60%-70%-90%-95%-100%，每步都要准确哦！ 3️⃣ 透明浸蜡：用二甲苯和无水乙醇混合液及二甲苯透明样品，再在60℃石蜡溶液中浸泡2小时。 4️⃣ 包埋切片：通过包埋机将组织包埋在蜡液中，凝固后修整并切片，厚度5微米。 5️⃣ HE染色：切片经过一系列酒精和二甲苯的浸泡，再在苏木精染液中染色5-10分钟，最后用伊红染液染色5分钟。 𐟎‰完成啦！你的石蜡切片已经准备好进行HE染色了，是不是很有趣呢？记得做好后给我尝尝，让我看看你的手艺如何！𐟘‹

细胞HE染色全攻略：从原理到步骤 ### 一、实验原理 𐟌ˆ 苏木素-伊红染色法（HE染色法）是细胞学中最经典的染色方法之一。它利用两种染料——碱性染料苏木素和酸性染料伊红，分别与细胞核和细胞质发生化学反应，从而在光镜下清晰地呈现出细胞的微细结构。这个过程既有化学反应，也有物理作用。从化学反应来看，组织细胞内含有酸性物质和碱性物质。细胞的酸性物质与碱性染料的阳离子结合，而细胞核的碱性物质与酸性染料的阴离子结合。因此，酸性细胞核被碱性的苏木素染成蓝色，而碱性的胞浆被酸性染料伊红染成红色。从物理现象来看，主要有吸附和吸收之说。HE染色提供良好的核浆对比染色，是细胞化学染色最常用的一种方法。二、实验用品 𐟧ꊥ›𚥮š液：常用95%乙醇和冰丙酮苏木精染液：称取苏木精粉0.5g，铵矾24g溶解于70ml蒸馏水中，然后取NaIO31g，水5ml，再加入甘油30ml和冰醋酸2ml，混合均匀，滤纸过滤，备用。伊红染液：称取0.5g水溶性伊红染液，溶于100ml蒸馏水中。稀盐酸乙醇溶液：用75%乙醇配制1%盐酸。系列浓度的乙醇、二甲苯、中性树胶。培养瓶、培养皿、眼科镊、盖玻片、载玻片、显微镜。三、实验步骤 𐟔슦 𗥓制备：对于贴壁生长细胞，胰酶消化，调整细胞浓度约1㗱05/ml，滴加于盖玻片上（置于6孔板中），培养相应时间后，取出细胞爬片，用PBS洗涤3次。样品固定：95%乙醇固定20min，PBS洗涤2次，每次1min。染核：苏木素染液染色2-3min，自来水洗涤。分色：镜下观察，若细胞核染色过深，用1%盐酸酒精溶液分色数秒，自来水洗涤。染胞质：浸入伊红染液染色1min，自来水洗涤。吹干或自然晾干细胞爬片后，中性树胶封片。若细胞用4%多聚甲醛固定，则染色时间相应延长，苏木素染色12-15min，伊红5min即可。

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